SISTEM SARAF

Sistem saraf biasanya menggunakan sinyal yang ditransmisikan oleh saraf. Ia juga memiliki organ-organ indera yang menerima rangsangan dari lingkungan dan organ lain dalam tubuh. Impuls dari organ indra perjalanan ke sistem saraf pusat di mana Informasi ditafsirkan. Perbedaan utama antara jaringan saraf ikan dan mamalia adalah bahwa dalam ikan ada pertumbuhan berkelanjutan dari jaringan ini.

Baca selengkapnya »

EFEK HETEROSIS

Terdapat  beberapa parameter yang  diamati terkait perhitungan heterosis. Parameter-parameter tersebut antara lain fekunditas, jumlah telur menetas, hatching rate, diameter telur, berat telur, jumlah larva menetas, panjang larva menetas, berat larva menetas, jumlah larva habis kuning telur, dan panjang larva lepas kuning telur. Setelah perhitungan parameter-parameter tersebut akan diperoleh hasil dan dimasukkaan dalam rumus heterosis. Adapun perhitungan Heterosis (H) dapat dihitung menggunakan rumus Tave (1986) dalam Kristianto et al.(1998), dengan rumus:

Baca selengkapnya »

Biologi Rajungan

Klasifikasi Rajungan

Menurut Mirzads 2009 Dilihat dari sistematiknya, rajungan Gambar 1 termasuk ke dalam : Kingdom : Animalia

Filum : Athropoda

Kelas : Crustasea

Ordo : Decapoda

Famili : Portunidae

Genus : Portunus

Species : Portunus pelagicus

Morfologi

Menurut Nontji (1986), ciri morfologi rajungan mempunyai karapaks berbentuk bulat pipih dengan warna yang sangat menarik kiri kanan dari karapas terdiri atas duri besar, jumlah duri-duri sisi belakang matanya 9 buah. Rajungan dapat dibedakan dengan adanya beberapa tanda-tanda khusus, diantaranya adalah pinggiran depan di belakang mata, rajungan mempunyai 5 pasang kaki, yang terdiri atas 1 pasang kaki (capit) berfungsi sebagai pemegang dan memasukkan makanan kedalam mulutnya, 3 pasang kaki sebagai kaki jalan dan sepasang kaki terakhir mengalami modifikasi menjadi alat renang yang ujungnya menjadi pipih dan membundar seperti dayung. Oleh sebab itu, rajungan dimasukan kedalam golongan kepiting berenang (swimming crab).

Ukuran rajungan antara yang jantan dan betina berbeda pada umur yang sama. Yang jantan lebih besar dan berwarna lebih cerah serta berpigmen biru terang. Sedang yang betina berwarna sedikit lebih coklat (Mirzads 2009). Rajungan jantan mempunyai ukuran tubuh lebih besar dan capitnya lebih panjang daripada betina. Perbedaan lainnya adalah warna dasar, rajungan jantan berwarna kebiru-biruan dengan bercak-bercak putih terang, sedangkan betina berwarna dasar kehijau-hijauan dengan bercak-bercak putih agak suram. Perbedaan warna ini jelas pada individu yang agak besar walaupun belum dewasa (Moosa 1980 dalam Fatmawati 2009).

Ukuran rajungan yang ada di alam bervariasi tergantung wilayah dan musim. Berdasarkan lebar karapasnya, tingkat perkembangan rajungan dapat dibagi menjadi tiga kelompok yaitu juwana dengan lebar karapas 20-80 mm, menjelang dewasa dengan lebar 70-150 mm, dan dewasa dengan lebar karapas 150-200 mm (Mossa 1980 dalam Fatmawati 2009). Secara umum morfologi rajungan berbeda dengan kepiting bakau, di mana rajungan (Portunus pelagicus) memiliki bentuk tubuh yang lebih ramping dengan capit yang lebih panjang dan memiliki berbagai warna yang menarik pada karapasnya. Duri akhir pada kedua sisi karapas relatif lebih panjang dan lebih runcing (Anonim 2007).

Reproduksi

Romimohtarto (2005) menyatakan bahwa musim pemijahan rajungan lebih mudah diamati dari pada ikan, hal ini dapat ditandai dengan terdapatnya telur-telur yang sudah dibuahi yang masih terbawa induknya yang melekat pada lipatan abdomen bersama pleopodanya. Musim pemijahan rajungan terjadi sepanjang tahun dengan puncaknya terjadi pada musim barat di bulan Desember, musim peralihan pertama di bulan Maret, musim Timur di bulan Juli, dan musim peralihan kedua di bulan September.

Untuk mengetahui kemampuan individu dalam menghasilkan keturunan (larva/anak) dapat dilihat dari jumlah telur yang dihasilkan oleh individu betina dalam suatu pemijahan. Nakamura (1990) menyatakan bahwa perhitungan fekunditas umumnya dilakukan dengan mengestimasi jumlah telur yang ada di dalam ovarium pada organisme matang gonad. Jumlah telur yang dihasilkan oleh kepiting rajungan bervariasi tergantung besarnya individu. Untuk kepiting yang panjang karapasnya 140 mm dapat menghasilkan 800.000 butir, sedangkan yang panjang karapaksnya 160 mm dapat menghasilkan 2.000.000 dan individu dengan panjang karapaks 220 mm menghasilkan 4.000.000 butir.

Menurut Nontji (1986), seekor rajungan dapat menetaskan telurnya menjadi larva mencapai lebih sejuta ekor. Selanjutnya massa telur kepiting rajungan yang berwarna kuning atau jingga berisi antara 1.750.000 hingga 2.000.000 butir telur.

Habitat

Menurut Moosa (1980) Habitat rajungan adalah pada pantai bersubstrat pasir, pasir berlumpur dan di pulau berkarang, juga berenang dari dekat permukaan laut (sekitar 1 m) sampai kedalaman 65 meter. Rajungan hidup di daerah estuaria kemudian bermigrasi ke perairan yang bersalinitas lebih tinggi untuk menetaskan telurnya, dan setelah mencapai rajungan muda akan kembali ke estuaria (Nybakken 1986).

Rajungan banyak menghabiskan hidupnya dengan membenamkan tubuhnya di permukaan pasir dan hanya menonjolkan matanya untuk menunggu ikan dan jenis invertebrata lainnya yang mencoba mendekati untuk diserang atau dimangsa. Perkawinan rajungan terjadi pada musim panas, dan terlihat yang jantan melekatkan diri pada betina kemudian menghabiskan beberapa waktu perkawinan dengan berenang (Susanto 2010).

Menurut Juwana (1997), rajungan hidup di berbagai ragam habitat, termaksud tambak-tambak ikan di perairan pantai yang mendapatkan masukan air laut dengan baik. Kedalaman perairan tempat rajungan ditemukan berkisar antara 0-60 m. Substrat dasar habitat sangat beragam mulai dari pasir kasar, pasir halus, pasir bercampur lumpur, sampai perairan yang ditumbuhi lamun.

Menurut Nontji (1986), rajungan merupakan salah satu jenis dari famili Portunidae yang habitatnya dapat ditemukan hampir di seluruh perairan pantai Indonesia, bahkan ditemukan pula pada daerah-daerah subtropis. Nyabakken (1986) mengemukakan bahwa rajungan hidup sebagai binatang dewasa di daerah estuaria dan di teluk pantai. Rajungan betina bermigrasi ke perairan yang bersalinitas lebih tinggi untuk menetaskan telurnya dan begitu stadium larvanya dilewati rajungan muda tersebut bermigrasi kembali ke muara estuaria.

Rajungan hidup pada kedalaman air laut sampai 40 m, pada daerah pasir, lumpur, atau pantai berlumpur (Coleman 1991).

DAFTAR PUSTAKA

Mirzads. 2009. Pengemasan Daging Rajungan Pasteurisasi dalam Kaleng. http://mirzads.wordpress.com/2009/02/12/pengemasan-daging-rajungan-pasteurisasi-dalam-kaleng/. (Akses 11 Juni 2010).

Nontji, A. 1986. Laut Nusantara. Djambatan, Jakarta. 105 hlm.

Fatmawati. 2009. Kelimpahan Relatif dan Struktur Ukuran Rajungan Di Daerah Mangrove Kecamatan Tekolabbua Kabupaten Pangkep.Skripsi jurusan Perikanan Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan Universitas Hasanuddin, Makassar

Anonim. 2007. Pengamatan Aspek Biologi Rajungan dalam Menunjang Teknik Perbenihannya. Warta Penelitian Perikanan Indonesia, Volume 10, No.1.

Romimohtarto, K dan S. Juwana. 2005. Biologi Laut Ilmu Pengetahuan tentang Biota Laut. Djambatan. Jakarta.

Nakamura K dan Supriyatna. 1990, Organogenesis dirung methamorphosis in the swimming crab, portunus trituberculatus, Nippon Suisan Gakkaishi, 56 (10): 1,561-1,564.

Nyabekken, J.W. 1986. Biologi Laut: Suatu Pendekatan Biologi. Penerbit Gramedia, Jakarta.

Moosa, MK. 1980. Beberapa Catatan Mengenai Rajungan dari Teluk Jakarta dan Pulau-Pulau Seribu. Sumberdaya Hayati Bahari, Rangkuman Beberapa Hasil Penelitian Pelita II. LON-LIPI, Jakarta. Hal 57-79.

Coleman. N. 1991. Encyclopedia of marine animals. Angus & Robertson, An Inprint of harper colling Publishers. Australia, 324 pp.

Juwana, S. 1997. Tinjauan tentang Perkembangan Penelitian Budidaya Rajungan (Portunus pelagicus,Linn). Oseana 22(4); 1-12.

Susanto, N. 2010. Perbedaan antara Rajungan dan Kepiting. http://blog.unila. ac.id/gnugroho/category/bahan-ajar/karsinologi/. (Akses 11 Desember 2010).

Baca selengkapnya »

REVIEW JOURNAL MIKROBIOLOGI

Recombinant lactobacillus expressing G protein of spring viremia ofcarp virus (SVCV) combined with ORF81 protein of koi herpesvirus(KHV): A promising way to induce protective immunity against SVCVand KHV infection in cyprinid fish via oral vaccination

            Koi herpes virus (KHV), merupakan penyakit virus ganas yang meyebabkan kematian massal pada ikan mas. Serangan penyakit ini tidak hanya menyerang Indonesia. Berdasarkan sejarahnya, serangan KHV menyerang pertama kali pada tahun 1998 dan terjadi di Israel tahun 1999. Untuk selanjutnya, beberapa kasus juga telah menyerang negara Amerika Serikat, Eropa, dan Asia. Penyakit KHV dapat menyebabkan kematian massal 80–100% dari populasi ikan mas dan umumnya pada kondisi suhu air 72–81°F (22–27°C). Serangan virus ini dapat terjadi pada berbagai umur ikan. Namun berdasarkan hasil uji kohabitasi, menunjukkan bahwa ikan ukuran benih lebih rentan dibandingkan dengan ukuran induk.

            Spring Viraemia Of Carp (SVC) merupakan penyakit/infeksi oleh virus yang bersifat akut haemorhagis dan menular, yang menyerang golongan ikan Cyprinids danlebih spesifik pada Common carp,Cyprinus carpio. Penyakit ini biasanya timbul pada musim semi (Spring) dan menyebabkan kematian pada semua umur.Common carp merupakan inang yang utama dan virus dapat menyerang ikandewasa dan muda. Dilaporkan pula bahwa virus pernah pula diisolasi dari golonganCyprinids yang lain. Silver carp, Bighead carp (Aristichthys nobilis), dan Crucian carp (Carassius auratus).  Secara eksperimental Pike Fry (Esox lucius) dan larvanya, fry dari carp, Grass carp (Ctenocephalon idella) dan Guppies (Lebistes reticulata). Tanda-tanda klinis dan patologis serangan SVC antara lain meliputi ikan berkumpul di bagian outflow, warna ikan menjadi gelap, perdarahan/ petekiaehaemorhagi, mata menonjol (exophthalmus), abdominal dropsy, biasanya dijumpai pula peritonitis fibrinosa dan ctarrhal atau enteritis yang nekrotik. Sedangkan Swimbladder Inflammation (SBI) yang virusnya identik dengan virus SVC, dapatmemperlihatkan gejala klinis/patologis yaitu kehilangan berat badan dankeseimbangan, warna kulit menjadi gelap/berubah, degenerasi/perdarahan pada dinding gelembung udara (swimbladder).

            KHV digolongkan sebagai virus DNA yang termasuk dalam famili Herpesviridae (contoh: herpes virus). Meskipun dalam beberapa diskusi ilmiah, mendiskusikan akurasi klasifikasi tersebut hingga tahun 2003, namun tahun 2004 diperoleh hasil yang menunjukkan kebenaran klasifikasi tersebut yang didasarkan pada morfologi dan kajian genetikanya. Penyakit KHV telah didiagnosa pada ikan koi dan ikan mas konsumsi. Namun demikian, spesies golongan cyprinid lainnya seperti common goldfish (Carassius auratus) dan grass carp (Ctenopharyngodon idella) menunjukkan bahwa tidak terserang KHV. Seperti halnya infeksi virus herpes lainnya, KHV diyakini berada dalam tubuh ikan mas terinfeksi untuk kelangsungan hidupnya sehingga ikan mas tersebut berpotensi sebagai carrier virus. Serangan KHV dapat menyebar dengan beberapa cara seperti halnya herpes virus lainnya. Penyebarannya dapat terjadi karena kontak langsung dengan ikan yang terinfeksi, air dari ikan terinfeksi dan atau melalui air atau tanah tempat ikan terinfeksi dipelihara. KHV sebenarnya hanya salah satu penyakit diantara beberapa penyakit yang ditimbulkan oleh virus. Dua jenis virus lainnya adalah spring viremia of carp (SVC) and carp pox (CHV-1). Hingga saat ini belum ada obat untuk ikan yang terserang KHV. Beberapa penelitian menunjukkan bahwa resistensi alami terjadi apabila suhu air media pemeliharaan dinaikkan hingga 30°C. Menaikkan suhu air ini memang tidak direkomendasi dalam pemeliharaan ikan mas/koi untuk waktu yang lama. Hal ini karena meskipun ikan tersebut resisten secara alami, namun dapat menjadi pembawa virus kepada ikan lainnya bila di tempat tujuan distribusi tidak melakukan hal yang sama. Cara lain yang dapat ditempuh adalah vaksinasi melalui penyuntikan, sehingga ikan secara biologis memproduksi antibody.

            Semi viremia virus ikan mas (SVCV) dan virus herpes koi (KHV) yang sangat menular dan patogen ikan cyprinid, menyebabkan kerugian ekonomi yang sangat besar dalam budidaya. Meskipun vaksin DNA dilaporkan inrecent tahun bisa menginduksi respon imun protektif di karper terhadap virus ini melalui injeksi, thereare sejumlah konsekuensi dan ketidakpastian yang berkaitan dengan vaksinasi DNA. Oleh karena itu, metode andpractical lebih efektif untuk menginduksi kekebalan protektif seperti pemberian oral akan sangat diinginkan. Inthis studi, kami meneliti utilitas dari Lactobacillus plantarum rekayasa genetik (L. plantarum) coexpressing glikoprotein (G) dari SVCV dan protein ORF81 dari KHV sebagai vaksin oral untuk menginduksi protectiveimmunity di karper melalui vaksinasi oral. Permukaan-ditampilkan rekombinan plasmid PYG-G-ORF81 waselectroporated ke L. plantarum, sehingga menimbulkan LP / PYG-G-ORF81, di mana protein fusi ekspresi dan lokalisasi OFG-ORF81 dari LP / PYG-G-ORF81 diidentifikasi oleh SDS -Page, uji andimmunofluorescence Western blotting. Partikel pakan umpan yang mengandung LP / PYG-G-ORF81 digunakan sebagai vaksin toimmunize carps melalui gastrointestinal rute. Dibandingkan dengan kelompok kontrol, karper lisan diimunisasi withthe LP / PYG-G-ORF81 diinduksi tingkat signifikan imunoglobulin M (IgM), dan imunogenik-ity yang dikonfirmasi oleh virus beban pengurangan terdeteksi oleh PCR setelah tantangan virus diikuti oleh perlindungan aneffective menilai 71% di karper divaksinasi dan 53% di koi divaksinasi sampai hari 65 posting tantangan, masing-masing. Penelitian kami di sini menunjukkan, untuk pertama kalinya, kemampuan rekombinan L. plantarum vaksin asoral terhadap SVCV dan infeksi KHV di karper, menunjukkan strategi multivalent praktis untuk thecontrol musim semi viremia ikan mas dan koi penyakit herpes.

            Partikel virus masih dapat aktif dalam air hingga empat jam. Penggunaan desinfektan berupa larutan klorin dapat digunakan untuk mengeliminir virus dalam air dan fasilitas lainnya tanpa ikan di dalamnya. Dosis dan lama penggunaan klorin yang sering digunakan adalah 200 ppm (200 mg/l) selama satu jam. Dosis ini tergantung pada tipe klorin yang digunakan. Untuk larutan yang kandungan sodium hipokloritnya sebanyak 5,25% per liter, penggunaan 35 mililiter per gallon air akan menghasilkan konsentrasi 200 mg/l. Quaternary ammonium chloride (QAC) yang direkomendasikan untuk digunakan sebagai desinfektan pada wadah dan peralatan lainnya adalah 500 ppm selama 1 jam. Wadah dan peralatan yang didesinfeksi tersebut kemudian dicuci untuk mengeliminir residu dari bahan desinfektan.

            Tindak karantina merupakan metode yang paling sering digunakan untuk menghindari masuknya KHV ke dalam populasi ikan mas yang sudah lama dipelihara. Agar tindak karantina dapat berjalan secara efektif, maka semua ikan baru harus ditempatkan dalam wadah/sistem terpisah dan idealnya berbeda lokasi gedung atau area dari ikan yang sudah lama dipelihara. Disamping wadah tersendiri, peralatan pun harus tersendiri atau dikhususkan bagi ikan yang baru masuk. Di pintu masuk dan ke luar gedung disediakan pula wadah disinfeksi untuk untuk kaki dan pencucian tangan. Waktu yang diperlukan untuk tindak karantina ini minimal 30 hari.

Baca selengkapnya »

CATATAN PPRAKTIKUM KRUSTACEA 2015

Teknik aklimatisasi

            Proses aklimatisasi penting dilakukan sebelum dilaksankanya proses penebaran benih. Aklimatisasi dibagi menjadi dua yaitu aklimatisasi suhu dan aklimatisasi salinitas. Aklimatisasi suhu dilakukan dalam waktu satu jam dengan cara kantong benih dimasukkan pada tambak. Tindakan tersebut dilakukan hingga suhu air dalam kemasan plastik mendekati atau sama dengan suhu air petakan yang dicirikan dengan munculnya embum di dalam plastik. Aklimatisasi salinitas air petakan tambak dilakukan setelah aklimatisasi suhu selesai. Aklimatisasi salinitas dilakukan dengan cara benur dimasukkan dalam ember dan ember tersebut dimasukkan sebagian air tambak kemudian didiamkan beberapa saat. Hal ini didukung oleh Hendrajat et al. (2003), aklimatisasi suhu air petakan udang vannamei dilakukan dengan cara meletakan plastik pengemas yang berisi benur ke dalam tambak. Tindakan tersebut dilakukan hingga suhu air dalam kemasan plastik mendekati atausama dengan suhu air petakan yang dicirikan dengan munculnya embum di dalam plastik. Aklimatisasi salinitas air petakan tambak dilakukan setelah aklimatisasi suhu selsai. Aklimatisasi salinitas dilakukan dengan cara air tambak dimasukan sebanyak 1-2 liter ke dalam kemasan plastik benur udang vannamei. Aktivitas tersebut dihentikan hingga salinitas air dalam kemasan plastik mendekati sama dengan salinitas air di petakan.

Teknik penebaran benur

Berdasarkan hasil praktikum yang telah dilaksanakan bahwa proses penebaran benih dilakukan pada jam 03.00 WIB. Penebaran dilakukan jam 03.00 WIB  bertujuan untuk mencegah mortalitas benur akibat pengaruh suhu. Suhu sangat mempengaruhi tingkat keberhasilan proses penebaran, suhu pada pukul 03.00 WIB bisa dikatakan baik karena suhu cukup rendah. Aklimatisasi suhu ini berlangsung selama 1 jam dan dilanjutkan penebaran benur ke tambak. Kantung plastik dibuka dan ditambah air sedikit demi sedikit. Apabila suhu air dalam kantong dan air tambak hampir sama,maka benih dimasukkan dalam ember/baskom yang berwarna cerah dan dimiringkan. Benur dengan sendirinya akan berenang ke perairan tambak. Menurut Adiwidjaya et al. (2008),benur yang sehat akan berenang aktif keluar ke tambak dan benur yang kurang baik/sehat akan pasif atau diam dalam ember.

Manajemen pakan

            Pakan merupakan faktor yang sangat penting dalam budidaya udang vannamei karena menyerap 60-70% dari total biaya operasional. Pemberian pakan yang sesuai kebutuhan akan memacu pertumbuhan dan perkembangan udang vannamei secara optimal sehingga produktivitasnya bisa ditingkatkan. Pada prinsipnya semakin padat penebaran benih udang berarti ketersediaan pakan alami semakin sedikit dann ketergantungan pada pakan buatan pun semakin meningkat. Pemberian pakan buatan didasarkan pada sifat dan tingkah laku makan udang vannamei. Pada praktikum krustase, manajemen pemberian pakan udang vannamei ditambak milik Pak Indra yaitu 3 kali dalam satu hari. Dimana pemberian pakan ini pada pagi, siang dan malam hari. Udang vannamei merupakan udang yang aktif mencari makanan pada siang dan malam hari. Menurut Nuhman (2009), menyatakan bahwa Udang vannamei mempunyai sifat mencari makan pada siang dan malam hari (diurnal dan nokturnal) dan sangat rakus. Sifat tersebut perlu untuk diketahui karena berkaitan dengan jumlah pakan dan frekuensi pemberian pakan yang akan diberikan. Pakan merupakan 90% dari biaya produksi dalam usaha budidaya udang, sehingga upaya mengoptimalkan penggunaan pakan yang akan diberikan pada udang merupakan suatu tindakan yang dapat menekan biaya dan meningkatkan efisiensi produksi.

Pakan yang digunakan untuk proses pendederan yaitu berupa pakan butan. Pakan yang diberikan dapat berupa pelet yang berukuran sesuai dengan bukaan mulut dari udang yaitu dengan ukuran PL 7-8. Pakan yang diberikan merupakan pakan yang berasal dari pabrik milik Pak Indra tersebut. Pemberian pakan dilakukan pada pukul 07.00 WIB; dan pada pukul 22.00 WIB. Menurut Nuhman (2009), udang vanname yang ada didalam hapa selain diberi aerasi juga diberi pakan sesuai dengan perlakuan. Pakan yang digunakan dalam penelitian ini adalah pakan buatan komersial yang tersedia di pasar. Kode pakan yang digunakan adalah kode pakan 03 untuk udang yang berumur 21-30 hari. Waktu pemberian pakan: 07.00; 11.00; 17.00; dan 22.00 WIB dengan pertimbangan kebiasaan petambak memberi pakan adalah pada jam-jam tersebut.

Teknik pemanenan

            Panen dibagi menjadi panen parsial dan panen total. Panen parsial bertujuan untuk mengurangi kepadatan dan biomass udang di kolam. Panen parsial yang pertama dilakukan untuk menurunkan kepadatan udang ditambak sehingga menjadi 125-140 ekor/m2, sedangkan panen parsial selanjutnya dilakukan jika rasio pakan dan kincir >12 atau biomass melebihi 1.8kg/m2. Panen total dilakukan setelah udang mencapai size yang diinginkan dan biomass mencapai puncak maksimalnya di kisaran 2.3-2.7/m2 atau pertumbuhan sudah tidak optimal sedangkan umur maksimal untuk pertumbuhan yang optimal 125 hari. Hal ini diperkuat oleh Simanjuntak et al, (2014) menyatakan bahwa Pada tambak budidaya “Mandiri”, ada 2 jenis panen yang sering dilakukan, yaitu panen parsial dan panen total. Biasanya panen parsial ini dilakukan ketika jumlah biomassa udang sudah dianggap melebihi kapasitas tambak.Panen parsial ini bertujuan untuk memindahkan sebagian udang vaname ketambak yang baru agar mengurangi intensitas pemangsaan sesama udang.

Panen parsial dilakukan seminggu sebelum dilakukan panen total, karena ketika udang vaname dimasukkan ketambak yang baru, udang vaname akan lebih agresif dan rakus. Penambahan bobot udang dapat terlihat dengan jelas. Meskipun demikian, panen parsial ini juga memiliki resiko yang tinggi, karena terkadang udang vaname tidak dapat beradaptasi dengan lingkungan air tambak yang baru, sehingga perlu dilakukan panen total pada saat itu juga. Sedangkan panen total adalah pemanenan secara keseluruhan baik menggunakan jaring kantong dengan metode pengurasan air tambak maupun dengan menggunakan katrol. Pemanenan dengan jaring kantong biasanya dilakukan dengan cara memasang jaring kantong pada pintu pembuangan air tambak. Udang vaname akan masuk kedalam jaring bersamaan dengan keluarnya air tambak. Setelah pemanenan selesai, udang vaname langsung dimasukkan kedalam ice box untuk pencegahan terjadinya rigor mortis sebelum sampai ketangan pengumpul (pengepul).

Proses pemanenan dilakukan setelah udang vaname berumur 120 hari dan mencapai berat, yaitu 50 ekor/kg. Bila udang sudah mencapai berat tersebut sebelum 120 hari, maka pemanenan bisa dilakukan.Pemanenan dilakukan pada waktu malam hari untuk mempertahankan kualitas udang. 2-4 hari sebelum pemanenan, tambak diberi kapur dolomite 80 kg/ha dan mempertahankan ketinggian air untuk mencegah proses molting. Bila kita melakukan teknik beternak udang vaname dengan benar, maka hasil yang kita dapatkan akan sangat memuaskan. Hal ini diperkuat oleh Budiardi et al, (2005) menyatakan bahwa Pemanenan, dilakukan setelah udang mencapai ukuran pasar yaitu sekitar 14 g ketika udang berumur 100 hari pemeliharaan. Panen dimulai pada sore hari dengan memasang jaring berukuran besar pada pintu panen dan membuang air melalui outlet tengah dan pintu panen.Udang yang terperangkap di jaring segera dimasukkan ke drum-drum plastik yang kemudian di sortasi.Udang yang tertinggal didasar tambak diambil satupersatu sampai tidak ada udang yang tertinggal.

Menurut BIP Riau (1994), menyatakan agar mutu udang tetap baik pada saat dipasarkan, diperlukan penanganan panen dan paska panen yang baik sehingga nilai jualnya akan tetap tinggi. Panen dilakukan pada malam hari atau dini hari, sebab udang aktif mencari makan sehingga mudah ditangkap dan udang tidak tahan terhadap sinar matahari langsung.Panen dilakukan dengan menggunakan alat tangkap seperti jala lempar. Tampunglah udang hasil panen pada bak penampung yang airnya mengalir atau ditampung pada hapa yang ditempatkan pada kolam yang aimya mengalir. Hindari perlakuan kasar sehingga udang tidak rusak atau terluka.Usahakan agar udang hasil panen terhindar dari sinar matahari langsung.

Supaya udang yang dipanen dapat terjaga kualitasnya, sebelum panen harus dipersiapkan wadah/tempat udang, air dan es dengan jumlah yang cukup dan menjaga kebersihannya. Udang yang telah dipanen dicuci dengan air bersih dan dibenamkan dalam wadah yang berisi air es dengan suhu - 4 ^oC, kemudian dibawa ke tempat penampungan untuk dilakukan sortir (WWF, 2014).

Persiapan transportasi

            Transportasi merupakan sarana yang digunakan dalam pengangkutan hasil panen udang. Dari pihak UD. Sido Rukun tidak menyiapkan transportasi untuk pengangkutan, karena pembeli atau pengepul akan datang ke lokasi tambak untuk mengambil hasil panen. Udang vaname yang dipanen dan dimasukkan ke wadah dan dibersihkan. Suhu pada udang dipertahankan dengan cara penambahan es balok. Selain itu hasil panen juga didistribusikan ke perusahaan yang dimiliki oleh Pak Indra. Biasanya hasil panen diangkut menggunakan mobil pick up untuk memudahkan dalam pengangkutan.

Simanjuntak, R., Massugito, dan Anita R. 2014. Analisis Budidaya Udang Putih (Litopenaeus vannamei) dengan Pola Semi- Intensive.

Budiardi, T., A. Muzaki dan N.B.P. Utomo. 2005. Produksi udang vannamei ( Litopenaeus vannamei) Di Tambak Biocrete Dengan Padat Peneberan berbeda. Jurnal Akuakultur Indonesia. 2: 109-113.

Nuhman. PENGARUH PROSENTASE PEMBERIAN PAKAN TERHADAP KELANGSUNGAN HIDUP DAN LAJU PERTUMBUHAN UDANG VANNAMEI (Litopenaeus vannamei). Jurnal Ilmiah Perikanan dan Kelautan. I (2): 193-197

Baca selengkapnya »

Teknik Pengangkutan Benih

            Umumnya petambak memasok bibit dari balai benih yang letaknya jauh dari tambak sehingga perlu dilakukan proses pengangkutan. Tokolan udang yang diangkut selama berjam-jam dengan kepadatan populasi tokolan yang tinggi, supplai oksigen yang terbatas serta tanpa pertukaran media air akan menyebabkan udang mudah mengalami stress. Mortalitas akibat vibriosis terjadi ketika udang (pada semua fase kehidupan) dalam kondisi stres. Penyakit kronis dapat mengakibatkan gangguan pertumbuhan dan menurunkan kualitas udang, sedangkan penyakit yang bersifat akut dapat menyebabkan kematian. Beberapa penyakit yang menyerang jenis udang penaied diakibatkan virus, bakteri, jamur, parasit, dan faktor abiotik lainnya.

Baca selengkapnya »

Reproduksi cacing laut (cacing nipah)

Pola reproduksi cacing nipah tergolong monotelik yang memijah hanya satu kali dalam satu siklus hidup dengan cara melepas gamet matang ke luar tubuh. Pola ini juga dijumpai pada polychaeta monotelik lain seperti Nereis virens dan N. Diversicolor. Pola gametogenesis polychaeta dapat dibedakan berdasarkan tempat pembentukan dan diferensiasinya. Pola pertama gamet dihasilkan dan berdiferensiasi dalam gonad, pola kedua gamet dihasilkan oleh sel-sel proliferasi yang kemudian akan dilepas dan berdiferensiasi dalam selom (tanpa gonad) dan pola ketiga adalah gabungan keduanya Cacing nipah N. rhodochorde bersifat gonokhoristik yang memiliki satu organ kelamin pada satu individu, berbeda dengan Cacing pandan N. hawaiiensis yang hermaprodit. N. rhodochorde tergolong polychaeta yang tidak memiliki organ penyimpan gamet secara khusus, karakter ini sama dengan Nereididae lain yang telah diteliti, umumnya juga tidak memiliki struktur khusus untuk proliferasi oogonia.

Baca selengkapnya »

Intensifikasi Bakteri Heterotrof dalam Media Air

Pada umumnya budidaya udang dilakukan pada kolam luar yang tergantung pada matahari dan komunitas alga untuk memproses limbah nitrogen dari udang dan untuk mensuplai oksigen ke dalam kolam. Sedangkan budidaya udang biofloc mendorong pertumbuhan komunitas bakteri dalam kolam (Rosenberry 2006). Sekali terbentuk dan terpelihara, maka kolam yang didominasi bakteri lebih stabil daripada kolam yang didominasi alga. Bakteri berakumulasi dalam gumpalan yang disebut floc; memanfaatkan limbah nitrogen 10-100 kali lebih efisien daripada alga dan merubahnya menjadi pakan yang berprotein tinggi bagi udang; bekerja siang dan malam; dan sedikit dipengaruhi oleh cuaca.

Baca selengkapnya »